Emilie Pinault


Fonction : Ingénieure d’études

Localisation : CBRS 2ème étage bureau 205

N° tel : 05.19.56.42.33

Adresse mail :

Recherche

Ingénieure d’études à temps partagé entre le laboratoire U1248 Pharmacologie et Transplantation et la plateforme BISCEm

Au sein de l’U1248, participation aux projets de recherche nécessitant des compétences en biochimie et/ou spectrométrie de masse :

  • développement des méthodes de préparation d’échantillons et des méthodes analytiques en spectrométrie de masse nécessaires à l’avancement des projets de recherche (acides gras à chaine courte, médicaments, …)
  • mise au point d’ELISA et de Western Blot

Au sein de la plateforme BISCEm, en tant que responsable du plateau de spectrométrie de masse :

  • Prestations en spectrométrie de masse, petites et grosses molécules : mise au point et conduite des expérimentations (préparation d’échantillons, analyses LC-MS/MS)
  • Exploitations et présentation des résultats
  • Gestion des coûts (calcul des coûts, élaboration de devis) et des moyens techniques (choix des investissements, maintenance et entretien des appareils)
  • Encadrement / démonstration

Enseignement

  • UE Biotechnologie du Master 2 « Bio-Santé », Limoges : présentation et visite du plateau de spectrométrie de masse
  • Jury de BTS « BioAnalyses et Contrôles », Lycée R. Dautry, Limoges

Parcours

2020-maintenant

U1248 Pharmacologie et Transplantation – Inserm, Université de Limoges
2018-maintenant

Plateforme BISCEm – US042 Inserm UAR2015 CNRS, Unversité de Limoges, CHU de Limoges
2006-2018

Plateau de protéomique puis Service Commun de Recherche et d’Analyse de Biomolécules de Limoges (SCRABL)
2006-2020

Unité de Génétique Moléculaire Animale – UMR 1061 INRA puis Laboratoire PEREINE, Université de Limoges
2006

Diplôme d’ingénieur spécialité Génie Biochimique et Alimentaire, Génétique Microbienne, option Technologie post-génomique – Institut National des Sciences Appliquées (INSA) Toulouse (31)
Master 2 Recherche : Microbiologie et Catalyse industrielle – INSA Toulouse (31)
2001

Baccalauréat Scientifique, spécialité Physique Chimie – Lycée Rabelais, Chinon (37)

Compétences

Préparation d’échantillons biologiques

  • Extraction de petites molécules à partir de cellules ou de fluides biologiques : extraction liquide-liquide, extraction sur phase solide (SPE)
  • Extraction de protéines à partir de cultures cellulaires, à partir de fluides biologiques (sang, urines, …) de tissu animal/humain (muscles, foie, …)  ou végétal (bois, plants, …) 
  • Méthodes de purification/concentration des protéines par précipitation, par déplétion des protéines majoritaires des échantillons humains ou par enrichissement par le système ProteoMiner

Les techniques de séparation

  • Electrophorèse en conditions dénaturantes et non dénaturantes,  Isoélectrofocalisation et gel bidimensionnel, Isoélectrofocalisation off gel
  • Transfert des protéines en milieu semi-liquide (Western-Blot) et immunorévélation

Analyse par spectrométrie de masse

  • systèmes de chromatographie liquide couplée à un spectromètre de masse : LCMS8060 (Shimadzu) et TimsTOF Pro2 (Bruker) couplé à LC40 Nexera X2 (Shimadzu) ou nanoElute 2 (Bruker)
  • logiciels de pilotage et d’acquisition des données : LabSolutions (Shimadzu), TimsControl / Hystar (Bruker), Analyst (Sciex)
  • logiciels de retraitement des données pour l’identification (ProteinPilot, Mascot, ProteoScape) et pour la quantification (Swath 2.0, MultiQuant, LabSolutions Insight, MetaboScape)